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測序實驗流程：
1 作用原理：
對實體組織分散的作用原理主要有3方面：① 可以破壞組織間的膠原纖維、彈性纖維等；②可以水解組織間的粘多糖等物質；③可以水解組織細胞間的緊密聯結裝置的蛋白質物質。酶消化法是實體瘤、培養細胞分散為單細胞的主要方法之一。常用的酶類試劑有：蛋白酶類——胃蛋白酶、木瓜蛋白酶、鏈酶蛋白酶和中性蛋白酶等，都能解離組織中的細胞。胰蛋白酶能水解脂鍵和肽鍵；膠原酶能降解幾種分子類型的膠原；溶菌酶能水解糖蛋白和肽的糖苷鍵；彈性蛋白酶能消化連接組織的糖蛋白和彈性蛋白的纖維。不同酶對細胞內和細胞間不同組分有特異作用，可根據分散組織類型來確定使用的酶類。
2 注意事項：
① 酶需要溶解于適當的溶液中，而這些溶液不致于造成酶效價降低；②要注意酶的使用濃度和消化時間；③要注意酶活性的PH值。如胃蛋白酶在堿性環境中失去活性，胰蛋白酶在中性溶劑中活性不佳等；④ 要隨時注意影響酶活性的其它因素，如酶的生產批號等。
化學處理法是將組織細胞間起粘著作用的鈣鎂離子置換出來，從而使細胞分散開來。
試劑的配制
① 0.2%EDTA配制：稱EDTA 0.2g，加入Hankˊs液100ml，封裝高壓消毒。置0℃-4℃保存；
② 胰酶加EDTA配制：胰酶0.25g 加PBS（pH7.0）200ml，濃度0.125%，EDTA 0.2g加PBS（pH7.0）100ml，濃度0.2%。各取40ml混合，分裝置冰箱保存，用時過濾即可使用。
實驗方法
① 將組織切成薄片，置入試管中；
② 首先加入EDTA液5ml，室溫下0.5h，離心棄之；
③ 再加入胰酶-EDTA液5ml。在37℃恒溫水浴振蕩器內30min；
④ 用300目尼龍網過濾，離心沉淀1000prm，5min。再以生理鹽水洗2-3次；
⑤ 細胞固定或低溫保存備用。
機械法分散實體組織包括：用手術剪刀剪碎或者用鋒利的解剖刀剁碎組織，用勻漿器勻漿，再用細注射針頭抽吸細胞或用300目尼龍網濾出單細胞懸液；采用搓網法也能獲得大量細胞。機械法易造成細胞碎片和細胞團塊，所以機械法常與其它方法配合使用。
1 剪碎法：
① 將組織塊放入平皿中，加入少量生理鹽水；
② 用剪刀將組織剪至勻漿狀；
③ 加入10ml生理鹽水；
④ 用吸管吸取組織勻漿，先以100目尼龍網過濾到試管中；
⑤ 離心沉淀1000prm,3-5min，再用生理鹽水洗3遍，每次以低速（500-800prm）短時離心沉淀去除細胞碎片；
⑥ 以300目尼龍網濾去細胞團塊；
⑦ 細胞用固定液固定或低溫保存備用。
2 網搓法
① 將100目，300目尼龍網扎在小燒杯上；
② 把剪碎的的組織放在網上，以眼科鑷子輕輕搓組織塊，邊搓邊加生理鹽水沖洗，直到將組織搓完；
③ 收集細胞懸液，離心沉淀500-800prm，2分鐘；
④ 固定細胞或低溫保存備用。
3 研磨法
準備一只70ml研磨器。
① 先將組織剪成1-2mm3大小組織塊；
② 放入組織研磨器中加入1-2ml生理鹽水；
③ 轉動研棒，研至勻漿；
④ 加入10ml生理鹽水，沖洗研磨器；
⑤ 收集細胞懸液，并經300目尼龍網過濾，離心沉淀500-800 prm，1-2 min，再以生理鹽水洗3 遍，離心沉淀；
⑥ 固定或低溫保存細胞懸液，備用。